Dátum hozzáadva: 2005.01.25 Mark: 1 2 3 4 5
A cikk szerzője: briya
Nyelv: Szavak száma: 4 644
Alkalmas papír: Egyetemi A4 száma: 19.2
Átlagos jegy: 2.95 Gyors olvasás: 32m 0s
Lassú olvasás: 48m 0s

3. Feldolgozza és vizsgálja meg a vizeletet kvantitatív módon és tenyésztéssel.

baktérium vizelet

Anyaggyűjtés
A tenyésztési teszthez a vizeletet úgy kell összegyűjteni, hogy kizárja az összegyűjtött vizelet szennyeződését. A közepes vizeletáramot steril kémcsőbe gyűjtik, vagy csak egy újonnan behelyezett tekercsnél tekerik fel a vizeletet. Kisgyermekek számára egy műanyag zacskót használva gyűjtünk egy gyűjteményt, amelyet a lyukon keresztül a húgycső szájához ragasztunk. A suprapubicus punkcióval történő gyűjtés a hólyagnak a hasfalon keresztüli szúró tűvel történő szúrása (különösen kisgyermekeknél). A vizeletet 2 órán belül fel kell dolgozni. gyűjtés után.

Anyagfeldolgozás
A vizeletet kvantitatív módon vizsgáljuk, meghatározzuk a baktériumok számát ml vizeletben. Hígítsuk a vizeletet 1: 100 arányban 50 μl + 5 ml sóoldattal. Az ilyen híg vizeletből 50 μl-t oltsunk CLED agarra és 50 μl MC-re. Hagyja kb. 15 percig ázni, és oltsa be a lemez felületére ... nem égetjük meg a fogantyút az egyes túrák között.
CLED agar - univerzális táptalaj - G- ütők, G + kokkok. Elnyomja a Protea mirabilis kúszó növekedését (KA ezt nem teszi meg). McConkey agar - G-mallets, 24 órán át műveljük. és értékelje a mennyiséget:
1,0 - a talaj steril maradt
2,1-4 telep - több mint 104 baktérium/1 ml vizelet - jelentéktelen bakteriuria
3,5-50 telep - 104 - 105 baktérium/1 ml vizelet - feltételezhető (valószínű) bakteriuria
4. több mint 50 telep - több mint 105 baktérium/1 ml vizelet - jelentős bakteriuria
5,2 és több baktériumfaj - szennyezett vizelet

Az ATB iránti érzékenység kvalitatív és kvantitatív értékelése - a lemezes módszer elve/magyarázza el, értékelje, oltja be a törzset és adjon hozzá lemezeket /.

4. Feldolgozza és vizsgálja meg a gennyet, hogy gennyes betegségekben aerob és anaerob baktériumok vannak-e.

Anyaggyűjtés
A tampont leggyakrabban a beteg területekről veszik fel vattacsomóval. Mindig az egészséges és a sérült szövet közötti határfelületről veszik. A folyékony anyagot szúrótű segítségével steril csőbe gyűjtik. Az anaerob vizsgálat céljából történő begyűjtés során a folyékony anyagot egy fecskendőbe veszik, amelyből a felesleges levegőt kiszorítjuk, és a tűt gumidugóba tesszük. Szövetdarabok küldhetők CO2-tal töltött csövekbe. Szállítási talajok is lehetségesek.

Talajművelés - anaerob
Az anyagot KA, MC, SA beoltják. A szaporítóközeg májleves, amely 24 óra múlva. megvárjuk a KA-t. A fejből vett tamponokhoz CA-t is adunk (hemofília).

Anyag feldolgozása aerob tenyésztéshez
Az anaerob baktériumokat az jellemzi, hogy nem tolerálják az oxigént a környezetükben. Az O2 jelenlétében való növekedés képessége szerint megkülönböztetjük az alapcsoportokat: - aerotoleráns (5% O2) - Clostridium perfringens
-közepesen súlyos anaerobok (1-2% O2), ide tartoznak a legtöbb orvosilag fontos faj - Cl. sporogének, Bacteroides fragilis
-szigorú anaerobok (kevesebb mint 1% O2) - Cl. haemolyticum

Beoltják VL agarra (Veillons) és VL agarra ATB-vel (erősen öntött talajok, redukáló anyagokat tartalmaznak, csökkentve a talaj redoxpotenciálját, ez a környezet elektromos feszültségének értéke). Az anaerobok negatív redoxpotenciálértékeken nőnek, amikor a redukált anyagok túlsúlyban vannak a környezetben. Az anaerobokat nem lehet megvédeni pl. a hidrogén-peroxid toxicitása előtt. A hidrogén-peroxid az oxigén hidrogénionokkal történő reakciójával képződik. Az anaerob baktériumok nem rendelkeznek a peroxidáz enzimmel (vagy hatástalanok). A szaporító közeg VL húsleves, amely 48 óra elteltével. oltottuk VL agarra. Használat előtt a VL húslevest forralással kell regenerálni,
vízfürdőben a felesleges O2 eltávolítására. Clostridialis fertőzés gyanúja esetén a VL agart is beoltjuk paraffinnal. Az oltott anyagot paraffinnal oltjuk (10 perc, 80 ° C), a közönséges baktériumok elpusztulnak, a clostridiumok spórákat képeznek. 24 órán át tenyésztjük, ha clostridia volt, akkor a paraffint felnyomják. Készítünk egy előkészítést - nagy, durva G + kalapácsok.

Az anaerob anyagokat anaerob környezetben kell termeszteni - ANAEROSTAT. Az edény csőtartót, CO2 és H generátort, katalizátort és környezeti indikátort tartalmaz. Az egész edényt egy termosztátba helyezzük és 48 órán át tenyésztjük.
a. Gram szerint festett közvetlen mikroszkópos minta, orientációs festés, főleg clostridia/durva G + kalapács/
b. Szilárd talajok - VL agar vérrel, VL agar ATB-vel (VAN, KAN, STR) a nem kívánt baktériumok szaporodásának elnyomására
c. folyékony talaj - VL húsleves, anaerob környezetben termesztik, vagy steril paraffinréteggel borítják, felhasználás előtt forralják (regenerálják, eltávolítják a talajból a levegőt)
d. hemokultúrás edények - speciálisan anaerobok tenyésztésére szolgálnak, amelyek vért vesznek közvetlenül az edényekbe

1. oxigén eltávolítása a környezetből kémiai úton, pirogallol reakciója szódával. Szükséglet: tiszta pirogallol, nátrium-hidrogén-karbonát, szűrőpapír, ragasztószalag, Petri-csészék VL agarral. Eljárás: 4: 1 arányban keverje össze a szűrőpapírral, hajtsa be a papírt, ragassza, nedvesítse, lezárja a tálat ragasztószalaggal vagy fedje le viaszsal.
2. Anaerosztát OXOID - katalizátor (fémhálót pellettel, palládium réteggel, felhasználás után regenerálni kell). Keverék, amely víz hozzáadása után H2-t és CO2-t szabadít fel egy katalizátor segítségével, a jelenlévő oxigént hidrogénnel egyesítve viszonylag alacsony hőmérsékleten (kb. 150 ° C) H2O-t képez. Anaerob környezet indikátor.
3. Biológiai módszer az oxigén eltávolítására a környezetből a Serratia marcescens törzs alkalmazásával.
4. Fiziológiai módszer - levegőelvezetés és pótlása nitrogénnel, CO2-val vagy ezek keverékével.